СУДЕБНО-МЕДИЦИНСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ КРОВИ

СУДЕБНО-МЕДИЦИНСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ КРОВИ

 

Как объект судебно-медицинских исследований, кровь издавна представляет интерес для судебных медиков, криминалистов, работников правоохранительной системы.

Перечень следственных вопросов, поставленных на разрешение экспертизы, является относительно стандартным, и применительно к исследованию крови имеет следующую последовательность:

  1. Имеются ли на представленных для исследования объектах следы крови?
  2. Если да, то какова ее видовая принадлежность (кровь человека или животного)?
  3. Какова ее половая принадлежность?
  4. Какова ее групповая принадлежность (по системе АВО)?
  5. Определение индивидуальной принадлежности крови.

Это необходимый минимум вопросов, на которые эксперт обязан дать научно обоснованные, конкретные и ясные ответы.

Иногда, в зависимости от обстоятельств дела, перед экспертом могут быть поставлены дополнительные вопросы:

  1. Кому принадлежит кровь: ребенку или взрослому человеку?
  2. Может ли представленная на исследование кровь принадлежать беременной женщине?
  3. Из какой области тела проистекала кровь, образовавшая след (каково ее региональное происхождение)?
  4. Какова давность образования следов крови?
  5. Каким количеством жидкой крови образован след?
  6. Определение прижизненности образования следов крови.

 

Как и любая другая жидкость биологического происхождения, кровь имеет определенный биохимический состав и обладает рядом присущих только ей свойств и признаков. Судебно-медицинское исследование крови базируется на использовании уже имеющихся представлений о ее составе и свойствах и их изменениях под влиянием различных экзогенных и эндогенных факторов, а также на дальнейшем ее изучении для нужд судебно-медицинской практики.

Первоначальным этапом исследования является обнаружение, описание и изъятие предметов со следами крови на месте их обнаружения (происшествия).

Данный этап условно подразделяется на несколько последовательных стадий.

 

 

 

 

 

2.1.         Обнаружение следов, имеющих внешнее визуальное
сходство с кровью

 

Под следами крови в судебной медицине понимают любое количество крови, находящееся в окружающей среде вне организма человека или животного.

Выявление следов, подозрительных на наличие крови, производят визуально при осмотре места происшествия, орудий нанесения повреждений, одежды потерпевших или обвиняемых при естественном, искусственном или смешанном освещении с использованием лупы или без нее.

Основным признаком, по которому, как правило, производится поиск, и обнаружение кровяных следов является их характерный цвет. Но цвет крови может изменяться в зависимости от различных внешних влияний: давности образования следа, температуры окружающей среды, влажности, степени инсоляции, физических свойств предмета, на котором находится след и т.п.

Свежеобразовавшееся пятно крови на светлых поверхностях обычно имеет красный цвет. Однако в связи с особенностями следонесущей поверхности окраска может изменяться: так, на свежей извести пятна крови имеют оранжевый цвет, на снегу – красный в центре пятна, ярко-розовый по периферии. В жидких средах пятна крови, как правило, не различимы, ввиду их полного или частичного растворения. Плохо различимы следы крови на тканях и предметах, окрашенных в пестрые или близкие к цвету крови тона. На темных тканях они могут выглядеть несколько более светлыми, чем окружающий фон. В таких случаях для обнаружения крови рекомендуется по поверхности ткани провести несколько раз скальпелем. При этом, вследствие разволокнения поверхностного слоя материи, следы крови визуализируются. Однако такой методикой не следует пользоваться при наличии небольших пятен крови, поскольку они могут быть полностью удалены с поверхности предмета-носителя при соскабливании.

Вследствие постепенного испарения влаги с поверхности кровяного следа, изменяются светоотражающая и светопоглащающая способности крови, а также довольно быстро начинается распад гемоглобина, вследствие чего подсохшие кровяные  пятна приобретают коричневатый или буроватый оттенок.

При образовании и последующем существовании кровяного следа при температуре окружающей среды в пределах 18 – 30° в условиях повышенной влажности кровь подвергается гнилостным изменениям, и пятно постепенно приобретает серый цвет с зеленоватым оттенком.

Замытые следы крови могут иметь желтоватый или желтовато-розовый цвет.

Поиск и обнаружение пятен крови значительно затрудняется, когда обнаруживаются признаки, указывающие на возможное удаление следов крови. Обычно бывают уничтожены более или менее  заметные пятна, но скрытые следы или следы малых размеров в большинстве случаев остаются, и их можно обнаружить при тщательном осмотре. В таких ситуациях необходимо исследовать те участки предметов, где кровяные следы уничтожить довольно сложно или они малозаметны (швы, карманы, различные щели, углубления, неровности, трещины и т.д.). При осмотре одежды следует обратить внимание не только на ее наружную поверхность, но и на изнаночную сторону. При  попытке уничтожения следов крови  (замывании, затирании и т.д.) они изменяют свою окраску, становятся малозаметными или совсем исчезают, но с изнанки или на внутренних слоях одежды пятна крови могут хорошо сохраняться и быть различимыми.

Кроме того, изнутри бывают заметны относительно крупные кровяные следы, в то время как очень мелкие (следы от брызг) различимы только с наружной поверхности, т.к. количество образующей их крови недостаточно для сквозного пропитывания ткани и проявления следа снаружи.

При визуальном исследовании обуви, прежде всего, следует обращать внимание на ее подошвенную поверхность, где в углублениях и трещинах может содержаться кровь.

Осматривая орудия травмы, должное внимание необходимо уделять местам соединения их отдельных частей (место соединения топора с топорищем, клинка ножа с рукояткой и т.д.).

При детальном исследовании места происшествия можно обнаружить следы крови в щелях пола, под плинтусами, на досках пола с нижней стороны, в области стока и т.д.

Если имеются данные о возможном расчленении трупа, тщательному осмотру подвергаются ведра, тазы, раковины, ванны, унитазы и другие подобные предметы.

Если осмотр производится на открытой местности, то осматривают траву, кусты, листья. Поверхность грунта, пропитанная кровью, выглядит более темной, чем смежные участки.

При затруднении в отыскании следов крови могут быть применены предварительные (ориентировочные) пробы на кровь.

Ориентировочные пробы используются для предварительной верификации следов крови. Указанные пробы способствуют выявлению следов, подозрительных на кровь, однако следует помнить, что предварительные пробы не являются специфичными, так как могут давать положительную реакцию с другими биологическими объектами. В тоже время не исключена возможность и негативной реакции с кровью. Ориентировочные пробы не доказывают присутствия крови, поэтому положительный результат должен всегда оцениваться критически, а отрицательный не должен быть основанием для отказа от дальнейшего поиска кровяных следов.

Наиболее часто применяются следующие химические реакции:

ü     с 3% раствором пероксида водорода,

ü     бензидиновая проба в модификации Воскобойникова,

ü     проба с люминалом,

ü     ультрафиолетовое облучение

Проба с 3% раствором перекиси водорода.  Суть этой реакции сводится к химическому взаимодействию фермента каталазы, являющейся структурным компонентом мембран эритроцитов, с перекисью водорода, в результате чего образуется вода и свободный кислород. Выделение кислорода обусловливает вспенивание капли перекиси, нанесенной на исследуемое пятно. Образующаяся при этом мелкопузырчатая пена белого цвета расценивается как положительный результат данной пробы.

Однако широкое повсеместное распространение каталазы в составе различных организмов, как животного, так и растительного происхождения резко снижает диагностическую ценность данной реакции. Вследствие неспецифичности указанной пробы положительные результаты могут быть получены с картофельным соком, вином, слюной, слезной жидкостью, молоком, тканью печени и др.

С другой стороны, в силу неустойчивости каталазы во внешней среде и ее подверженности различным экзогенным влияниям, отрицательные реакции могут быть получены и с кровью. В частности, каталаза легко инактивируется при гниении крови, высыхании, в кислой среде, губительное действие на нее оказывает УФО. Иногда отрицательные реакции возможны вследствие разложения самой перекиси водорода, например в условиях повышенной инсоляции.

Проба с бензидином. Данная проба основана на способности фермента пероксидазы транспортировать кислород с одного вещества на другое. Поэтому используемые для этой реакции реактивы содержат смесь двух веществ: акцептора и донора кислорода. В случае наличия крови, или только фермента пероксидазы осуществляется процесс восстановления вещества-донора и окисление вещества-акцептора, сопровождающийся изменением цвета реактива.

В настоящее время применяется реактив, состоящий из перекиси бария, бензидина и цитрата. После предварительного разведения реактива в воде в полученном растворе смачивают кусочек ваты и прикасаются им к исследуемому пятну. В присутствии крови тампон приобретает ярко-синее окрашивание.

Следует отметить, что пероксидаза встречается практически во всех растительных клетках, кроме того, ряд биохимических компонентов человеческого организма обладает выраженной пероксидазной активностью (миоглобин, цитохромы). Вместе с тем, отрицательные результаты могут быть получены и с кровью, например, в случаях трансформации гемоглобина в гематопорфирин. Все это объясняет низкую специфичность подобных химических реакций.

Общим недостатком вышеописанных проб является то, что они способны уничтожить кровь в незначительных по размеру следах, что делает невозможным ее дальнейшее исследование.

Реакция с люминалом. Основана на визуально определяемом свечении, возникающем в результате выделения энергии в ходе экзотермической реакции. Необходимым условием протекания подобной реакции является определенный уровень рН. Применяется в качестве предварительной пробы на кровь при осмотре затемненных помещений, или помещений значительной площади.

Реакция осуществляется путем нанесения капли реактива на подозрительное пятно или опрыскивания раствором из пульверизатора всей площади помещения. Появление ярко-голубого свечения доказывает наличие крови в исследуемых пятнах.

Проба с применением ультрафиолетового облучения: относительно свежие следы крови в ультрафиолетовом свете имеют бархатистый вид и темно-коричневый цвет. Если в результате трансформирующего влияния каких-либо внешних воздействий гемоглобин крови превращается в гематопорфирин, то такие пятна крови при освещении их УФ лучами дают ярко-оранжевую колоризацию.

Следует иметь в виду, что подобное свечение можно наблюдать при облучении следов ржавчины и некоторых видов красок.

 

2.2.         Изъятие, упаковка и пересылка объектов со следами,
внешне похожими на кровь

 

При обнаружении предметов и объектов с визуально различимыми следами, имеющими внешнее сходство с кровью, необходимо их вначале подробно описать и сфотографировать, желательно с использованием цифровой фотокамеры.

В ходе осмотра места происшествия разрешается изымать и упаковывать объекты только с сухими следами, т.к. кровь на влажных предметах быстро загнивает, что делает ее непригодной для дальнейшего исследования.

При описании изъятого в качестве вещественного доказательства предмета следует указать точное его название, материал, из которого он изготовлен, форму, размеры (вес), цвет.

При этом желательно изъять предмет целиком, если он не слишком велик (одежда, нож, топор). Это позволит эксперту в дальнейшем более точно сориентироваться в локализации, форме и механизме образования пятен, и дать следователю более полноценную информацию об обстоятельствах и деталях имевшего место события.

При значительных габаритах объекта (стол, дверь, авто) изымается часть предмета-носителя со следами, и отдельные фрагменты без следов, для контрольного исследования.

Иногда возникает необходимость изъятия подозрительных на кровь следов путем соскабливания или смыва (с предметов, представляющих какую-либо ценность). В таких случаях кровь соскабливается острым скальпелем или бритвой на лист чистой бумаги и завертывается в ней наподобие аптечного порошка, подписывается, откуда, когда и кем был взят соскоб.

Смыв производится с использованием влажной марли, смоченной в физрастворе, путем статического контакта ее с предметом-носителем и последующим высушиванием в условиях комнатной температуры, вдали от солнечного света и радиаторов парового отопления.

В тех случаях, когда кровяные следы расположены на стенах, необходимо изымать сам след вместе с участком стенного покрытия достаточных размеров для контрольного исследования.

Следы крови, пропитавшие землю, изымаются с помощью лопаты на всю глубину проникновения крови. Дополнительно, для контроля, берется участок грунта, не пропитанный кровью.

При обнаружении кровяных следов на снегу или в смеси с водой, их необходимо перенести в сосуд, потом на марлю, впитывающую жидкость. Затем марлю-следоноситель высушить и направить на исследование вместе с контрольным образцом.

Упаковка вещественных доказательств должна обеспечить их сохранность, предотвратить возможность потери или подмены.

В качестве упаковочного материала целесообразно использовать полиэтиленовые пакеты, на которых должно быть указано, что находится в пакете, откуда, кем и когда изъято.

Не рекомендуется производить пересылку вещественных доказательств в мягкой упаковке. С этой целью лучше всего использовать фанерный или картонный ящик. Во избежание случайного контакта, в один ящик или сверток не следует помещать образцы жидкой крови и вещественные доказательства.

С целью сохранения пригодности вещественных доказательств для дальнейшего исследования и получения в последующем максимально объективной следственной информации, необходимо оберегать их от загрязнения посторонними веществами, инсоляции, действия высоких температур, повышенной влажности, трения.

Вместе с вещественными доказательствами эксперту должны быть направлены:

Постановление о назначении экспертизы;

Протокол осмотра места происшествия;

Протокол осмотра и изъятия вещественных доказательств;

 

 

2.3. Установление механизма образования следов крови
на месте происшествия

 

В судебно-медицинской практике очень часто для реконструкции деталей произошедшего события возникает необходимость исследования механизма образования кровяных следов на месте происшествия. Данное исследование обладает значительной информативностью и позволяет установить взаиморасположение и позы пострадавшего и нападавшего, скорость и траекторию передвижения раненого или трупа, особенности личности преступника, индивидуальные следообразующие особенности травмирующих предметов.

Свежеизлившаяся кровь обладает всеми свойствами свободно текущей жидкости: вязкостью, поверхностным натяжением, определенным удельным весом. Форма кровяных следов определяется силой тяжести, внешнеэнергетическими воздействиями, свойствами следонесущей поверхности.

Все следы крови можно условно разделить на элементарные и сложные.

Элементарными называются единичные следы, несущие информацию о тех физических факторах, под влиянием которых они сформировались (лужи, потеки, брызги, капли). Их форма во многом зависит от свойств следовоспринимающей поверхности.

Сложные следы – это совокупности элементарных следов, дающих информацию о динамике их образования (следы волочения, следы от струйного истечения и фонтанирования крови, брызги от ударов по окровавленной поверхности, инерционная деформация следов крови и др.).

Также следы крови можно подразделить на контактные (мазки, отпечатки, следы волочения) и бесконтактные (лужи, капли, брызги, потеки).

Лужи крови. Лужи представляют собой значительные скопления крови, возникающие в результате сильного (при повреждении крупных сосудов или сердца) или длительного (при повреждении более мелких сосудов) кровотечения под действием силы тяжести на невпитывающих горизонтальных поверхностях или поверхностях с небольшим наклоном. При этом на впитывающих поверхностях, благодаря явлению капиллярности, образуются участки пропитывания.

Существует несколько возможных механизмов образования луж и пропитываний:

§                   Вследствие закономерного вытекания крови при непосредственном соприкосновении области повреждения (раны) со следовоспринимающей поверхностью. При этом кровь из раны равномерно растекается по подлежащей поверхности, формируя лужу с ровными гладкими, четко очерченными краями. Следует помнить, что форма и размеры луж зависят не только от количества излившейся крови, но и от характера и особенностей следонесущей поверхности. Так, вытекание крови на впитывающую поверхность приводит к образованию участков пропитывания большей площади, чем лужи, образуемые тем же объемом крови, но на непроницаемой поверхности.

§                    В итоге механизма слияния множества капель, падающих с различной высоты. В таких случаях по периферии луж обнаруживаются дополнительные следы крови (секундарные брызги), образующиеся в результате вторичного разбрызгивания.

§                    В результате одномоментного падения значительного объема крови с некоторой высоты на следовоспринимающую поверхность. Например, если кровь из какого-либо сосуда выплеснуть на пол. При этом у одного из краев лужи образуются полосовидные следы и следы от брызг, указывающие направление движения крови.

Потеки крови. Это равномерные по ширине полосовидные следы, образующиеся под действием силы тяжести и явления смачивания на отвесных поверхностях и поверхностях со значительным наклоном. Потеки крови образуются на коже или одежде при истечении крови из раны, в результате стекания крови от брызг, капель, мазков или отпечатков, при их попадании на отвесные или наклонные поверхности (стены, окна, двери и др.). При этом в нижней части потека отмечается наличие булавовидного расширения, образование которого связано с тем, что по мере стекания крови ее масса уменьшается, вследствие распределения по следонесущей поверхности, и происходит уравнивание силы тяжести с силой поверхностного натяжения, поэтому дальнейшее движение крови прекращается и она скапливается на дистальном конце потека. Наличие булавовидного расширения указывает направление стекания крови.

Длина потека крови определяется несколькими факторами: количеством истекшей крови, образующей след, ее вязкостью и другими реологическими свойствами, характером и степенью наклона следовоспринимающей поверхности, а также ее впитывающей способностью.

По направлению потеки могут быть прямолинейными и искривленными. Это зависит от формы, положения и подвижности источника кровотечения или предмета, по которому стекает кровь, а также от наличия препятствий, возникающих на пути движения крови. Если направление потека крови не соответствует положению травмированного участка тела, явившегося источником кровотечения, или имеются множественные разнонаправленные и пересекающиеся потеки крови, то по всей вероятности положение тела изменялось в период времени от момента начала кровотечения до момента свертывания крови. В ряде случаев возможно установление очередности образования перекрещивающихся потеков. Если временной промежуток между образованием потеков невелик (до 10 минут) каждый последующий потек крови, встречаясь с предыдущим, у места контакта умеренно расширяется и, постепенно набирая массу, пересекает его либо сливается с ним. Иногда позднее образовавшийся потек, не пересекает первый, а изменяет свое направление и располагается параллельно ему. Если после образования первого потека прошло значительное количество времени, то от второго потека его можно отличить по цвету крови: при прочих равных условиях в первом случае она будет иметь более темный цвет с бурым оттенком.

При проникновении крови в промежутки или щели между двумя невпитывающими поверхностями за счет сил поверхностного натяжения и смачивания образуются так называемые затеки (за плинтусами, между досками пола).

Помарки крови. Следы крови, образующиеся на различных поверхностях в результате их контакта с окровавленными предметами и объектами, называются помарками. В зависимости от механизма их образования помарки делятся на два вида: отпечатки и мазки.

Отпечатки образуются в результате статического контакта окровавленного предмета со следовоспринимающей поверхностью за счет давления и абсорбции (следы рук, одежды, обуви). Они несут информацию об индивидуальных свойствах испачканного кровью объекта и позволяют в ряде случаев идентифицировать конкретного человека, оставившего отпечаток.

Мазки возникают в результате динамического контакта окровавленного объекта со следовоспринимающей поверхностью за счет трения и абсорбции. Не имея определенной формы, они все же могут частично отображать некоторые признаки окровавленного предмета и давать информацию о направлении его перемещения.

Разновидностью мазков в более крупном масштабе являются следы волочения, возникающие чаще всего при перетаскивании окровавленных тел. При этом структура этих следов зависит от многих факторов (характера контактирующих поверхностей, скорости перемещения, реологии крови). Так перемещение тела в окровавленной одежде дает следы более равномерной окраски с выраженным линейным рисунком, чем при волочении обнаженного тела. Это не относится к хорошо всасывающим и интенсивно абсорбирующим поверхностям, т.к. ввиду быстрого пропитывания их кровью первоначальная структура следа искажается.

Капли крови. Следует заметить, что капля – это некоторый объем жидкости, который в соответствии с законом сохранения энергии имеет сферическую форму. Формирование капли происходит на любых поверхностях в результате взаимодействия сил поверхностного натяжения и массы жидкости по периметру отрыва. Количество жидкости, образующей каплю, определяется ее вязкостью, плотностью и др. физическими параметрами. Следы от капель крови образуются в результате свободного (без придания дополнительного ускорения) падения капель с некоторой высоты. При этом источник кровотечения располагается всегда выше уровня образования данного следа.

Форма и размеры следов, образующихся в результате падения капель крови, зависят от высоты и угла падения, скорости движения источника кровотечения, характера следовоспринимающей поверхности, вязкости и плотности крови и др.

Так при отвесном падении капель на ровную горизонтальную поверхность с незначительной высоты образуются следы округлой формы, диаметр и очертания краев которых определяются высотой падения. При падении с высоты до 10 см след от капли имеет четкие, ровные, слегка волнистые края и диаметр от 0,7 до 1,0 см. Необходимо отметить, что след капли не может быть меньше 7 мм, даже при минимальной высоте падения. При высоте падения 10 – 30 см диаметр следа увеличивается до 1,5 см, контур зазубрен за счет дополнительного радиального распределения крови по периферии следа. При высоте более 50 см диаметр основного следа может достигать 2 – 2,5 см, а по периферии появляются элементы вторичного разбрызгивания в виде радиально отходящих лучей и секундарных брызг семечкообразной формы. Количество и площадь распределения следов вторичного разбрызгивания с высотой постепенно увеличивается. При высоте 150 – 200 см диаметр следа приближается к 3 см, а площадь распределения секундарных брызг достигает 15 – 20 см.

Большое влияние на форму следов оказывает угол падения капель крови. Установлено, что при падении капель на поверхность, угол наклона которой составляет от 30 до 75 0 , образующиеся следы имеют форму овала, вертикальный диаметр которого постепенно увеличивается. Иногда такие следы могут приобрести форму восклицательного знака, узкий конец которого направлен в сторону движения капли и окрашен более интенсивно вследствие инерционного смещения крови. Широкий конец следа направлен в сторону источника кровотечения, содержит меньше крови и окрашен менее интенсивно. Если угол падения капель меньше 30 0 след трансформируется в короткий потек со скоплением основной массы крови в его нижней части.

Существуют данные о влиянии характера следовоспринимающей поверхности на особенности следов от капель крови. Наиболее типичные следы, сохраняющие после высыхания свои первоначальные свойства, образуются на гладких невпитывающих или слабо впитывающих поверхностях. Наименьшей информативностью обладают следы от капель крови, образующиеся на шероховатых хорошо впитывающих и ворсистых поверхностях.

Брызги крови. Брызги – это скопления крови варьирующего объема и массы, образующиеся под воздействием дополнительной кинетической энергии. Следы от брызг крови располагаются на ограниченной площади, в виде прямой полосы, веера, конуса и др. Они имеют различную форму: округлую, овальную, семечкообразную, в зависимости от угла и скорости падения на следовоспринимающую поверхность. Вытянутость следов находится в прямой зависимости от скорости и в обратной от угла падения крови, и не зависит от ее объема,  массы, а также высоты падения.

По размеру брызг можно сделать предположительный вывод о расстоянии между источником кровотечения и следонесущей поверхностью. Чем мельче следы от брызг, тем меньше расстояние. Этот факт объясняется тем, что более мелкие брызги, имея минимальную массу, при неизменной скорости обладают меньшей кинетической энергией, чем крупные, и поэтому не способны преодолевать значительные расстояния.

Различают несколько механизмов образования следов от брызг крови:

1.     от фонтанирования крови (например, при артериальном кровотечении),

2.     от удара по окровавленной поверхности,

3.     от размахивания окровавленным предметом.

Брызги от фонтанирования образуются струей крови непосредственно после пересечения крупных артериальных стволов, что обусловлено высоким давлением в артериальной системе. Характер образующихся при этом следов определяется углом наклона следовоспринимающей поверхности и скоростью падения струи крови. При попадании крови на плоскую горизонтальную поверхность, вследствие ее рассеивания из-за сопротивления воздуха, образуются следы от брызг, распределяющиеся на конусовидной площади, размеры которой зависят от высоты и скорости падения струи крови. Форма пятен от отдельных брызг в пределах конусовидного следа чаще вытянутая овальная или имеет вид восклицательных знаков, узкие концы которых направлены в сторону движения крови, а широкие концы имеют противоположную направленность. В совокупности следы образуют однонаправленные цепочки из отдельных одинаковых по форме элементов, имеющих тенденцию к слиянию. На всем протяжении цепочка следов, как правило, прерывистая, что обусловлено пульсирующим выбросом крови из раны. При попадании крови на отвесные поверхности (стены, двери, окна) образуются цепочки брызг с отходящими от них потеками крови. В проксимальных отделах цепочки пятна крови крупнее и расположены гуще, в дистальных – мельче и реже.

Брызги от удара по окровавленной поверхности имеют форму восклицательных знаков, узкие концы которых обращены в сторону полета крови. Следы от брызг располагаются  последовательно, в виде веерообразно расходящихся цепочек. Центр схождения радиусов цепочек располагается непосредственно над местом соударения.В случае нанесения множественных ударов по окровавленной поверхности может отмечаться наличие большого количества рядом расположенных, перекрещивающихся и накладывающихся друг на друга радиальных цепочек с несколькими центрами схождения радиусов.

Брызги от удара по окровавленной поверхности не образуются при однократном травматическом воздействии, ввиду отсутствия динамического взаимодействия орудия травмы с кровью после первого удара.

Брызги от размахивания образуются в результате срыва крови с поверхности окровавленного предмета. Размер и форма кровяных следов зависит от размеров и формы травмирующего орудия. При незначительной по площади  поверхности отрыва капель крови (кончик ножа) образуются следы от брызг, располагающиеся в виде прерывистых цепочек. Если для нанесения повреждения использовался предмет с более значительной площадью травмирующей поверхности (молоток, обух топора), следы крови имеют вид непрерывных дорожек.  

Закономерность изменения формы кровяных следов та же, что и при других механизмах, т.е. прослеживается четкая зависимость особенностей структуры следа от скорости, угла падения крови, характера следообразующей поверхности.

Инерционно деформированные следы крови. Образуются на окровавленном предмете при размахивании им.

В основе механизма образования инерционно деформированных следов крови лежит действие центробежных и центростремительных сил.

Во время замаха, когда предмет движется по дуге, жидкая кровь перемещается вдоль него в центробежном направлении, формируя след в виде продольной полосы. Формирование этого следа заканчивается в момент остановки предмета в крайней точке. Вначале обратного движения происходит инерционное смещение  крови в перпендикулярном по отношению к продольной оси направлении в сторону, противоположную поверхности соударения. В момент удара происходит резкая остановка травмирующего орудия и в результате действия центростремительных сил изменяется направление движения крови. Инерционное смещение крови отмечается в направлении, перпендикулярном по отношению к продольной линии следа, образовавшегося при замахе. Таким образом, кровяной след в целом приобретает на поверхности травмирующего предмета форму «гребешка», отражающего инерционную деформацию следов крови.

 

2.4. Установление наличия крови на исследуемых объектах

Эксперт, приступая к исследованию объекта, прежде всего обязан выяснить с чем он имеет дело, т.е. доказать или опровергнуть факт наличия крови и только после этого продолжить исследование по выяснению видовой и групповой ее принадлежности.

До недавнего времени в судебно-медицинской практике для установления факта наличия крови на тех или иных объектах использовались микрокристаллические реакции и морфологическое исследование.

Суть микрокристаллических проб сводилась к выявлению характерных кристаллов, образующихся в результате взаимодействия гемоглобина с определенными химическими веществами. Обнаружение таких кристаллов подтверждало наличие крови в исследуемом объекте. С этой целью получали кристаллы солянокислого гематина (кристаллы Тейхмана). Проба основывалась на реакции взаимодействия хлористого натрия, уксусной кислоты и красящего вещества крови с последующим образованием двоякопреломляющих кристаллов в виде косых параллелограммов темно-коричневого цвета. Негативные результаты возможны в случаях гнилостной трансформации крови, длительной инсоляции, сильного высыхания пятна.

В результате химического взаимодействия гидроксида натрия, пиридина, глюкозы и красящего вещества крови получают полиморфные кристаллы гемохромогена темно-красного цвета. Они часто имеют игловидную или ромбовидную форму, располагаются группами в виде звезд, снопов, пучков.

Морфологический метод основан на микроскопическом обнаружении эритроцитов в том или ином пятне. Однако, вследствие высыхания, в пятнах крови эритроциты теряют свою двояковыпуклую форму, ссыхаются в глыбки, и их контуры становятся невидимыми. Кроме того, если следонесущая поверхность имеет шероховатую поверхность, то неровности рельефа маскируют форменные элементы крови и не дают возможности их рассмотреть.

Тем не менее, этот метод довольно эффективен при обнаружении единичных эритроцитов в крайне незначительных по размеру пятнах на материале с ровной, гладкой поверхностью.

Применяемые в настоящее время методики установления наличия крови являются достаточно специфичными и очень чувствительными. Основаны они на обнаружении гемоглобина и его производных (гемохромогена, гематопорфирина). Кроме того, для исследования достаточно ничтожно малого количества объекта, поэтому данные методы позволяют выявить кровь даже после ее полного или частичного удаления с предмета-носителя. Наиболее распространенными из них являются:

§        микроспектральный анализ

§        тонкослойная хроматография

Микроспектральный метод выявления крови основан на способности гемоглобина поглощать волны света в пределах желто-зеленой части спектра, при этом образуются черные полосы различной интенсивности. Положительным результатом считается совпадение спектров исследуемого объекта и контрольного образца жидкой крови. Однако отсутствие диагностического спектра в исследуемом объекте не позволяет сделать вывод об отсутствии крови. В таких случаях необходимо прибегнуть к более чувствительным методикам, например, тонкослойной хроматографии или попытаться выявить спектр гематопорфирина, который дает темные полосы поглощения в красно-оранжевой части спектра.

Тонкослойная хроматография. В тех случаях, когда испытуемый след ничтожно мал, целесообразно прибегнуть к методу тонкослойной горизонтальной хроматографии. Методика относительно проста и удобна для экспресс-исследования. В качестве хромотографической камеры используются обыкновенные чашки Петри, в которые помещаются небольшие хромотографические пластинки с тонким слоем сорбента. Вытяжки из подозрительных на наличие крови следов наносят на пластинки. Затем на дно чашек Петри заливают растворитель, уровень которого не должен превышать 1 мм. Таким образом, растворитель, проходя через вытяжки, разлагает имеющуюся кровь на компоненты, которые благодаря явлению капиллярности, равномерно  распределяются по пластинке.

Визуализация компонентов крови, в частности гемоглобина, осуществляется с помощью раствора бензидина в сочетании с 3% перекисью водорода. Гемоглобин, обладая пероксидазной активностью, разлагает перекись с образованием атомарного кислорода, который окисляет бензидин и реагент приобретает синюю окраску.

Отрицательный результат, полученный при применении перечисленных методов, не позволяет сделать вывод об отсутствии крови в предоставленном материале. В данном случае эксперт вправе лишь констатировать факт её не выявления.

 

2.5.  Определение видовой принадлежности крови

 

Когда присутствие крови на исследуемых объектах считается объективно доказанным, необходимо определить ее видовую принадлежность, т.е. принадлежность человеку или какому-либо животному.

В ходе расследования уголовных дел довольно частыми являются такие ситуации, когда преступник приписывает следам крови, обнаруженным на его одежде нечеловеческое происхождение. Нередко обстоятельства совершенного преступления могут указывать на возможное наличие крови животных на одежде преступника (хищение животных), вместе с тем, лица, имеющие дело с животными (ветеринары, мясники, охотники) могут иметь на одежде следы крови животных некриминального происхождения.

Для предварительного определения вида крови раньше пользовались морфологическим методом. Известно, что эритроциты человека и всех видов млекопитающих животных не содержат ядер, поэтому факт их выявления или не выявления хоть и не позволяет достоверно установить вид крови, но ориентирует эксперта для дальнейшего более целенаправленного исследования.

В настоящее время для определения видовой принадлежности белков крови в исследуемых следах применяется реакция кольцепреципитации (РКП). Это классическая реакция иммунитета, в основе которой лежит взаимодействие антигенных белковых структур крови со специфическими и комплементарными для них антительными компонентами сыворотки. В данном случае в роли антигенов выступают плазменные белки – альбумины и глобулины, функцию антител несут иммуноглобулины преципитирующей сыворотки.

Перед непосредственным проведением реакции производят проверку титра и специфичности используемых сывороток, готовят вытяжку из пятна крови путем извлечения и экстрагирования белка изотоническим раствором хлористого натрия. При исследовании труднорастворимых пятен (белки плазмы находятся в денатурированном состоянии в виду различных физических и химических воздействий) экстракцию целесообразно производить в 0,1% растворе трипсина.

Технической особенностью исполнения РКП является наслоение сыворотки на раствор антигена без смешивания. Результатом подобного взаимодействия компонентов реакции является образование кольца преципитации на границе соприкосновения реагентов.

Помимо основного опыта с вытяжкой из пятна крови необходимо проводить контрольные опыты с вытяжками из смежных участков вне зоны кровяного следа. При чем в ходе проведения реакции используются специфичные сыворотки не только для человеческой крови, но и для белков крови различных видов животных.

Возможно несколько вариантов интерпретации РКП.

Если в основном опыте получена положительная реакция вытяжки из пятна крови с сывороткой на белок человека, и отрицательные результаты с вытяжками из контрольных участков, то можно сделать вывод о том, что исследуемая кровь принадлежит человеку.

Иногда может быть получен положительный результат одновременно с двумя преципитирующими сыворотками, специфичными как для белков крови человека, так и для белков крови какого-либо животного. В таком случае не исключается возможность наличия в пятне смешанной крови человека и животного или двух видов животных.

Если в ходе реакции был получен отрицательный результат с человеческой сывороткой, то это может свидетельствовать либо об отсутствии белка, либо о его недостаточном количестве в вытяжке. В первом случае можно сделать вывод о принадлежности крови какому-либо животному, во втором ­– увеличить сроки экстрагирования белка или использовать более чувствительные варианты реакции.

Кроме вышеописанного классического метода РКП для определения видовой принадлежности крови используют реакцию встречного иммуноэлектрофореза.

Принцип метода основан на способности белков перемещаться в агаровом геле под влиянием электрического поля. Это справедливо для антигенов и антител, т.к. они имеют белковую природу. Поэтому при одновременном внесении в агаровый гель они движутся навстречу друг другу, а гомологичные вступают в реакцию между собой с образованием полос преципитации белого цвета, что и расценивается как положительный результат реакции.

Видовая принадлежность крови может быть определена и другими реакциями иммунитета, в основе которых также лежит реакция взаимодействия антигена и антитела (РСК, РИФ и др.), однако они не получили широкого практического применения в судебно-медицинской практике.

 

2.6. Установление половой принадлежности крови

 

Методики определения половой принадлежности крови, как правило, основаны на выявлении в ядрах форменных элементов крови Yили Х-хроматина. Кроме того, половое дифференцирование крови возможно путем выявления морфологических различий в строении ядер гранулоцитов при использовании специфических методов окраски.

Ядра нейтрофильных, эозинофильных и базофильных лейкоцитов имеют сегментарное строение, т.е. состоят из двух или более сегментов. При чем ядра некоторых лейкоцитов имеют дополнительные структурные образования, различной формы выросты, обладающие половой специфичностью.

Наиболее часто встречающимся и характерным признаком, несущим определенную информацию о половой принадлежности является почкующийся вырост, внешне имеющий некоторое визуальное сходство с барабанной палочкой. Его условно обозначают буквой А. Это ничто иное, как скопление хроматина, сконцентрированное преимущественно в утолщенной части данного структурного образования. Связь выроста с ядром осуществляется посредством тонкой слабо окрашивающейся хроматиновой нити. Часть выроста, содержащая скопление хроматина окрашивается более интенсивно, чем ядро в целом, что позволяет его легко визуализировать с помощью специальных методов окраски. Наличие и выявление структурных образований типа А свидетельствует о том, что образцы исследуемой крови принадлежат лицу женского пола.

Кроме выроста типа А некоторой половой специфичностью обладает отросток типа В. По своей сути это ничто иное, как локальное выпячивание ядра, сообщающееся с последним при помощи толстой укороченной ножки. Образования типа В также характерны для женской крови. В судебно-медицинской практике выросты А и В рассматриваются как эквивалент полового Х-хроматина.

Однако следует отметить, что вышеописанная методика не отличается абсолютной достоверностью, т.к. вышеуказанные морфологические образования спорадически встречаются и в лейкоцитах мужской крови.

С этих позиций более достоверной является методика выявления половых хроматинов, из которых Х-хроматин встречает ятолько в клетках женского организма, а Y– хроматин присущ только мужским клеткам.

Выявление Х-хроматина. Впервые Х-хроматин был обнаружен в 1949 году при исследовании нейронов головного мозга кошек. В последствие эти образования получили название телец Барра. В формировании Х-хроматина на ранних стадиях эмбриогенеза принимает непосредственное участие материнская или отцовская Х-хромосома, находящаяся в неактивном состоянии. Вторая хромосома, присущая женским клеткам, активна и не выявляется. Диагностической значимостью обладает Х-хроматин, в виде глыбки располагающийся у внутренней поверхности кариолеммы и более интенсивно, чем другие структуры ядра воспринимающий ядерные красители.

Для выявления Х-хроматина кровь из исследуемых объектов выделяют путем предварительного экстрагирования уксусной кислотойс последующим центрифугированиемполученного раствора. Центрифужный осадок переносят на предметное стекло и окрашивают азур- эозиновой смесью. Полученные препараты исследуют в световом бинокулярном стереомикроскопе. При этом на фиолетовом фоне ядерных структур клеток Х-хроматин выделяется четкими контурами и выглядит более интенсивно окрашенным.

Вероятность выявления полового хроматина на объектах исследования определяется многими факторами. Причем степень сохранности хроматина зависит не столько от давности образования кровяного следа, сколько от условий, в которых находился следонесущий объект. Своеобразным фиксатором структур хроматина в ядрах является процесс высыхания. Чем быстрее пятна крови подвергаются высушиванию, тем лучше сохраняются клеточные ядра и соответственно половой хроматин. При хранении в условиях пониженной влажности половой хроматин может выявляться в течении многих лет.

В условиях повышенной влажности интенсивно протекающие процессы аутолитического и гнилостного распада полового хроматина значительно затрудняют его выявление на объектах судебно-медицинского исследования.

Выявление Y-хроматина. Y-хроматин образован дистальными участками длинных плеч Y-хромосомы и определяется в виде четко контурирующегося тельца, расположенного в ядре и примыкающего к внутренней поверхности кариолеммы. Его выявляют при помощи специальной окраски с использованием производных акридина, чаще всего применяется водный раствор акрихина – флюорохром. При дальнейшем исследовании в люминесцентном микроскопе Y-хроматин выглядит в виде ярко флюоресцирующего четко очерченного фрагмента ядра.

Следует иметь в виду, что сегментоядерные лейкоциты и, прежде всего, нейтрофилы, являются довольно чувствительными по отношению к неблагоприятным внешним воздействиям, что может оказать негативное влияние на результаты исследования. Поэтому целесообразно исследовать лимфоциты с целью выявления Y– хроматина, в ядрах которых он лучше сохраняется.

 

2.7. Определение групповой специфичности крови

 

Если кровь на вещественных доказательствах происходит от человека, то следующим этапом является определение ее групповой принадлежности по системе АВ0, а также, при необходимости, по другим генетически обусловленным системам: MNSs, Р, Льюис, и др. с использованием реакции абсорбции-элюции, гемагглютинации, реакции торможения гемагглютинации.

Для определения групповой принадлежности жидкой крови используется реакция гемагглютинации, основанная на способности эритроцитов к склеиванию при взаимодействии с соответствующими сыворотками.

Для определения группы крови в пятнах применяется реакция абсорбции.

До недавнего времени для АВО-типирования использовались только поликлональные антисыворотки человеческого происхождения, которые характеризовались невысокой чувствительностью и неабсолютной специфичностью.

В настоящее время с помощью гибридомной технологии путем слияния иммунизированных соответствующим антигеном лимфоцитов и миеломных клеток были получены своеобразные клетки-гибриды, способные синтезировать в неограниченном количестве определенные моноклональные антитела. Таким образом были получены моноклональные реагенты анти-А, анти-В и анти-Н.

Реакция гемагглютинации для определения групповой принадлежности жидкой крови производится в пробирке, куда вносится смесь отмытых эритроцитов и реагент анти-А и анти-В. Результат оценивается после центрифугирования по наличию или отсутствию агглютинации эритроцитов.

Реакция гемагглютинации оказывается непригодной для определения группы крови в пятнах по той причине, что жидкая сыворотка в пятне не содержится, а эритроциты довольно быстро разрушаются и очень прочно фиксированы на материале предмета-носителя, поэтому выделить их для проведения РГА в целом виде невозможно. В таких случаях применяется реакция абсорбции-элюции.

Сущность реакции состоит в том, что при взаимодействии одноименных агглютининов и агглютиногенов происходит реакция абсорбции агглютининов, т.е. агглютинины связываются с агглютиногенами. Если при абсорбировании сыворотки ее агглютинин встретился с одноименным агглютиногеном (α с А, или В с β), то способность такой сыворотки склеивать (агглютинировать) соответствующие ей эритроциты после абсорбции снижается или совсем исчезает. Если же сыворотка в процессе реакции абсорбции соприкасается с агглютиногеном, не соответствующим ее агглютинину, то такая сыворотка после абсорбции не утрачивает способности агглютинировать соответствующие ей эритроциты.

Для проведения реакции абсорбции используют моноклональные антитела в титре 1: 32, которые приводят в соприкосновение с фрагментами исследуемого материала (например, нитями ткани одежды). Длительность абсорбции – 18 часов. Затем реагент отсасывают и вновь устанавливают его титр. Значительное снижение титра только анти-А свидетельствует о наличии в исследуемом пятне агглютиногенов А, что соответствует II группе крови. Снижение титра анти-В доказывает присутствие агглютиногенов В и принадлежность исследуемой крови к III группе. Снижение же титров и анти-А и анти-В позволяет сделать вывод о наличии крови IV группы. Если титр антител остается неизменным, то это позволяет предположить наличие крови группы 0.

После отсасывания реагентной сыворотки производят полное удаление  избытка неабсорбированных антител путем многократного (3-4 раза) отмывания нитей материала в охлажденном изотоническом растворе.

В дальнейшем, термическим или химическим путем разрушают образовавшиеся в процессе абсорбции комплексы антиген-антитело и производят элюирование (выведение) абсорбированных антител в изотонический раствор хлорида натрия. Элюцию в физраствор обычно осуществляют на предметных стеклах. Для этого нити исследуемого материала на стеклах заливают двумя каплями физраствора и помещают в термостат на 30 минут. После этого к препаратам добавляют по капле 0,5% взвеси стандартных эритроцитов группы А или В и микроскопически определяют наличие или отсутствие агглютинации.

 

2.8. Определение индивидуальной принадлежности крови

 

Для решения этой задачи используется явление наследственного группового полиморфизма. С этой точки зрения каждый человек имеет свою собственную, индивидуальную и неповторимую комбинацию групп крови по различным системам.

Структурные компоненты крови каждого отдельно взятого человека содержат антигены, передаваемые по наследству от родителей. Эти антигены, имеющие принципиально сходное строение, все же отличаются по некоторым свойствам друг от друга у разных людей. Кроме антигенов существуют изоантигены. Это различные варианты строения одного и того же антигена. Антигены одного типа, но несколько отличающиеся по свойствам, составляют систему. В настоящее время науки известно многие десятки систем крови, в каждой из которых выделяют различное количество групп в зависимости от наличия или отсутствия тех или иных специфических антигенов. Всю совокупность известных систем крови можно разделить на три группы: эритроцитарные (АВО, Льюис, резус), сывороточные (гаптоглобина, гамма-глобулина) и ферментные (кислая фосфатаза, фосфоглюкомутаза и др.).

Групповая специфичность каждого индивидуума определяется его принадлежностью к какой-либо группе в пределах каждой серологической системы в отдельности. Например, по системе АВО ко второй группе, по МNSs к пятой, по систему Льюис к третьей и т.д. Информативность и достоверность такого исследования возрастает с увеличением количества исследуемых систем.

В последнее время все чаще используется метод генотипической идентификации человека, в основе которого лежит методика ДНК-типирования (в частности, полимеразная цепная реакция).

 

2.9. Установление происхождения крови
от ребенка и  взрослого человека

 

Иногда в ходе расследования дел о детоубийстве на различного рода предметах или объектах обнаруживаются кровяные следы. Подозреваемые или обвиняемые объясняют происхождение этих пятен имевшимся у них кровотечением или другими причинами некриминального характера. Поэтому заключение эксперта о наличии крови, принадлежащей погибшему ребенку, может оказаться очень веским доводом для более обоснованного обвинения.

Решение этого вопроса стало возможным благодаря изучению структуры и свойств гемоглобина. Было установлено, что кровь плода и ребенка до 1 года содержит так называемый фетальный гемоглобин, на долю которого в разные возрастные периоды приходится от 80% (у новорожденных) до 12 % (у детей годовалого возраста). Эта разновидность гемоглобина отличается от гемоглобина А, присущего крови взрослого человека, физико-химическими свойствами и электрофоретической подвижностью.

Кроме того, существует цитологический метод определения фетального гемоглобина.

Различия крови ребенка и взрослого человека обусловлены также строением некоторых плазменных белков. Так с помощью методов электрофореза возможно дифференцирование крови по структуре L1 – фетопротеина.

С помощью биохимических методик можно установить различную активность некоторых ферментов детской и взрослой крови. Но ввиду технической сложности исполнения эти методы не получили широкого применения в судебно-медицинской практике.

Кроме того, в периферической крови новорожденных и детей до года встречаются ядросодержащие предшественники эритроцитов (эритробласты, нормобласты), не свойственные крови детей старшего возраста и взрослых людей. Наряду со зрелыми сегментоядерными лейкоцитами нередко обнаруживаются и незрелые формы (метамиелоциты и даже миелоциты), ядра которых отличаются бобовидной или подковообразной формой.

Необходимо отметить, что возможности установления возрастной принадлежности крови ограничиваются возрастом ребенка и давностью образования кровяного следа. Более точные и достоверные результаты могут быть получены, если возраст ребенка не превышает одного года, а давность образования следов 3-4 недель.

 

2.10. Установление беременности по следам крови

 

Для решения этого вопроса используются данные о том, что кровь беременной женщины содержит гормон – хорионический гонадотропин,а также ряд специфических ферментов (окситоциназа, лейцинаминопептидаза). Эти вещества присутствуют в крови женщины во время беременности и в течение нескольких месяцев после родов и хорошо сохраняются в пятнах крови даже 2-3 месячной давности. Выявление этих белковых субстанций подтверждает факт происхождения крови от беременной или недавно родившей женщины.

 

2.11. Определение регионального происхождения крови

 

Определение источника кровотечения базируется на том, что клеточные элементы различных органов и тканей имеют характерное строение и ряд специфических особенностей, которые позволяют определить органную или тканевую принадлежность клеток.

Кроме того, при морфологическом исследовании крови могут быть обнаружены примеси содержимого, свойственного органам, из которых потеряна кровь.

Так, в случаях ректального кровотечения могут быть обнаружены примеси составных элементов кала, клетки многослойного плоского эпителия.

При кровотечении из носа в пятнах крови можно выявить клетки многослойного плоского эпителия преддверия носовой полости, реже – клетки мерцательного эпителия более глубоких отделов носовой полости.

В случаях желудочно-кишечного происхождения крови отмечается наличие примеси пищевых масс, иногда клеток однослойного цилиндрического эпителия.

При раковых опухолях прямой кишки и матки выявляются атипичные эпителиальные клетки.

При повреждении периферических сосудов кровь содержит лишь форменные элементы и единичные клетки эндотелия интимы.

В судебно-медицинской практике довольно часто приходится решать вопрос о возможности происхождения крови из половых путей женщины. Цитологическая картина неменструальной крови всегда более скудная, чем менструальной. Это легко объясняется отсутствием процессов отторжения эндометрия в неменструальную фазу цикла.

Менструальная кровь отличается выраженным цитологическим разнообразием и, прежде всего, наличием большого количества клеток вагинального эпителия в основном поверхностных и промежуточных, реже встречаются парабазальные и базальные клеточные элементы. Идентификация вагинального эпителия производится на основании изучения морфологических особенностей эпителиальных клеток, последние, как правило, крупных размеров, сморщенные, с нечеткими контурами и завернутыми краями. Важной отличительной особенностью этих клеток является наличие большого количества гликогена в цитоплазме. Помимо вагинальных, менструальная кровь может содержать клетки эндометрия, цервикального канала, слизь, а также специфическую микрофлору, в частности палочку «Дедерлейна» и кокковую флору. Таким разнообразием клеточных составляющих объясняется более выраженный осадок после центрифугирования менструальной крови. Следует отметить, что клеточный состав менструальной крови не зависит от дня менструального кровотечения и срока образования кровяных следов.

В отличие от периферической крови, кровь менструальная содержит в активной форме ряд специфических ферментов: диаминомидазу, ЛДГ4,5, значительное количество фибринолизина. Вместе с тем она отличается низкой концентрацией фибрина. Именно этим обстоятельством и ее высокой фибринолитической активностью объясняется тот факт, что менструальная кровь не способна к свертыванию и обладает более высокой степенью растворимости, чем иная кровь неменструального происхождения.

Кроме вышеописанных методик предложен иммуноэлектрофоретический метод выявления эндометрального протеина рр-12, уровень которого в менструальной крови в 2000 раз выше, чем в периферической.

В настоящее время довольно перспективной является возможность обнаружения менструальной крови с использованием антифибриногеновых сывороток.

 

 

2.12. Определение давности образования кровяного следа

 

В середине ХХ века был предложен метод определения давности образования пятен крови, основанный на выявлении феномена распространения хлоридов из области кровяного следа. В момент образования пятна крови и в течение непродолжительного времени его существования ионы хлора локализованы в зоне пятна. В дальнейшем отмечается их миграция в периферические участки кровяного следа с образованием вокруг него своеобразной кольцевидной каймы. Ширина «хлоридной каймы» прямо пропорциональна количеству времени, прошедшего с момента образования пятна крови. Визуализировать зону концентрации ионов хлора можно предварительно обработав пятно с помощью раствора нитрата серебра. При этом образуется хлорид серебра, который выявляется в виде пояска черного цвета по периферии кровяного следа.

Тем не менее, данная методика не лишена довольно существенных недостатков, которые ограничивают ее использование в судебно-медицинской практике. Так, скорость диффузии ионов хлора в пятне крови подвержена значительным колебаниям в зависимости от влажности окружающей среды, характера материала следонесущего предмета, размеров кровяного следа.

Поэтому на современном этапе для определения возраста кровяных следов пользуются более достоверными методиками.

Известно, что составляющие компоненты крови сами по себе и в силу внешних влияний претерпевают определенные циклические изменения. Прежде всего, это касается структуры гемоглобина, который с течением времени через ряд последовательных стадий преобразуется в гематопорфирин. Каждая из промежуточных фракций дегенеративного распада гемоглобина обладает своим собственным спектром поглощения, выявление которого возможно с помощью метода микроспектрального анализа. Таким образом, зная примерный срок образования каждой из фракций и характерный для нее спектр, можно ориентировочно судить о давности образования кровяного следа. Всегда необходимо учитывать возможную погрешность, делая ссылку на постоянно изменяющиеся условия внешней среды, в которой находился след, характер следонесущей поверхности, исходное состояние самой крови.

По мере «старения» кровяного следа изменяется и активность ферментных белков, которые являются неотемлимой составляющей плазмы крови. Поэтому определение степени их активности также может использоваться для решения вопроса о давности образования кровяных пятен. Предложен электрофоретический метод определения активности ферментов холинэстеразы, лейцинаминопептидазы и окситоциназы. Установлено, что сывороточная холинэстераза сохраняется в пятнах крови до 3-5 месяцев, лейцинаминопептидаза – 1,5-2 месяца, окситоциназа – 80-100 дней. 

В последнее время ведется интенсивный поиск новых, более достоверных критериев для определения срока образования следов крови. В частности изменение ее парамагнитных свойств имеет определенную временную закономерность, что может быть использовано в судебно-медицинских целях.

 

2.12. Определение количества жидкой крови  в ее следах

 

В судебно-медицинской практике для решения этой задачи пользуются методом Штрассмана. Суть метода сводится к изначальному определению сухого остатка крови в пятне с последующим перерасчетом на жидкую кровь.

На первом этапе производят взвешивание фрагментов пятна крови и чистой ткани одинаковой площади. При этом определяют разницу в весе чистого и испачканного фрагментов ткани. В дальнейшем, учитывая разность весовых показателей, рассчитывают вес сухого остатка крови на всей площади кровяного следа. Например, пятно крови имеет общую площадь 50 см2. Предыдущим исследованием установлено, что вес фрагмента пятна площадью 25 см2  равен 3 г, а вес чистого куска следонесущей ткани равен 1,5 г. Таким образом, вес сухого остатка крови в пятне площадью 25 кв. см равен 3 – 1,5 = 1,5г.

Исходя из этого, получаем вес всего сухого остатка на всей площади имеющегося пятна: 1,5 = 3г.

После определения количества сухого остатка крови в исследуемом пятне, необходимо выяснить, каким количеством жидкой крови оно образовано. Экспериментальным путем было установлено, что 1 л жидкой крови образует 211 г сухого остатка. Посчитав количество сухой крови в пятне и, составив соответствующую пропорцию, определяют количество жидкой крови. Нами было установлено, что сухой остаток в пятне составляет 3 г, исходя из этого, составляем соответствующую пропорцию:

 

211    1000

 

        3         Х

Исходя из этого, Х = 3  = 14,2 г.

 

Однако эти расчеты не точны, в виду того, что не всегда известны условия внешней среды, в которой находилось исследуемое пятно (влажность, степень инсоляции, температура и др.), поэтому и степень высыхания крови в каждом конкретном случае разная. Кроме того, вес сухого остатка крови можно определить лишь ориентировочно.

 

 

 

2.13. Определение прижизненности образования следов крови

 

Возможности судебно-медицинской науки в этом плане весьма ограничены. Кровь, излившаяся из ран еще живого человека, совершенно не отличается от крови человека, умершего несколько минут назад. Поэтому достоверно сказать, что пятно крови образовалось еще при жизни, или сразу после смерти не представляется возможным. Однако, спустя несколько часов, в связи с прогрессирующими аутолитическими процессами, протекающими в тканях, в крови трупа появляются ферменты, при жизни обслуживавшие реакции внутриклеточного метаболизма. Появление этих ферментов в крови обусловлено посмертной дестабилизацией клеточных мембран и выходом их во внеклеточную среду.

Так как ферменты довольно устойчивы к высушиванию, их можно выявить даже в застаревших следах крови и, исходя из этого, предположить, что кровь, образовавшая след, проистекала из трупа человека, умершего несколько часов назад.

Иммунологический метод различения трупной крови и крови живого человека основан на определении продуктов распада фибриногена в трупной крови с помощью специальной антифибриногеновой сыворотки.